血液质控分析前的质量控制是实验室全面质量控制的重要组成部分和基础，也就是说，实验室要想获得准确、可靠及对临床应用有价值的可靠检测结果，必须进行分析前的质量控制，认识和控制分析前的因素，不仅是实验室技术人员的努力方向，也有赖于医院临床和护理部门的配合，它反映医院的整体素质和管理水平。分析前的质量控制应包括临床医师正确选择检验项目及化验申请、病人准备、样本采集、标本运送及标本保存，任何一个环节处理不当，均会影响检验结果的准确性。
病人准备和标本采集是检验质量保证的重要环节之一。由于病人受到各种内在和外界的影响，可使检验结果产生或大或小的误差，为此检验前病人须作适当准备，可减少随机分析误差。
1.检验项目的种类通常可分为三类即用于筛查的试验、用于诊断的试验、用于治疗效果及预后观察的试验。
2．化验单的填写必须保证包括患者的所有信息(包括姓名、性别、年龄、门诊或住院号、科别、临床诊断等)以及其他特定的识别号，如急诊临床用药情况；要求检测的项目，以及检测项目需附加的信息，如24h尿蛋白定量应附加24h尿量，内生肌酐清除率应附加24h尿量、身高、体重等信息；申请检测的负责人签名；标本采集类型及采集时间、采集人签名。
3.根据所采样本的类型和所分析的物质而定。因为许多非疾病因素，如空腹与否、劳累或运动、体位、服用药物等等都会影响检验结果。如饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、己醛、乙酸盐增加。长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高，平均红细胞体积增加，谷氨酰转肽酶(GGT)亦较不饮酒的人为高，甚至可以将此项检查作为嗜酒者的筛选检查。
4.多数试验，尤其血液化学、免疫学检查，采集前应空腹12h。进餐后血浆脂肪、蛋白质、糖类有所增加。有人研究于高脂餐后2-4h采血，多数人碱性磷酸酶含量增高，主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系，O型或B型兼为Le+分泌型者增高更明显。一般认为高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加，但不影响肌酐含量，高比例不饱和脂肪酸食物，可减低胆固醇含量；香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍；含咖啡因饮料，可使血浆游离脂肪酸增加，并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。食物如含有动物血液，可引起粪隐血假阳性。故在做相应检验时，应对食物有一定的控制。吸收的饮食成份不仅可以直接影响测定吸光度(如TG造成的混浊)，而且也可以改变血液成份，影响测定结果，如餐后血中葡萄糖升高，脂肪餐后血中TG水平增加可持续9h，因此血脂测定应素食3天后才能采集标本，另外餐后Ca、P、Bil、UA和Alb均有统计学上的改变。
然而空腹时间过长(>16h)同样也会影响血液中成分，如Alb、PA、C3、Tf及Glu等含量下降。过度空腹，若达24h以上，某些检验会有异常结果。例如血清胆红素可因空腹48h而增加240%；血糖可因空腹过长而减少为低血糖；血脂空腹过度，甘油三酯、甘油、游离脂肪酸反有增加，而胆固醇无明显改变。故空腹并非越长越好，近年国外有人主张胆固醇单项检验，不必空腹抽血。
5.标本采集前要求病人处于较好的休息状态，过度劳累可使血浆葡萄糖、CK、AST、LD等升高；另外运动亦能引起血液成分的改变，轻度运动可以引起血糖升高，继之引起皮质醇及胰岛素的上升，许多与肌肉有关的酶如CK、AST、LD等都可在运动后出现不同程度的增加。其中以CK为主，激烈运动对血细胞亦有影响，短期运动会使淋巴细胞增多，较长期运动后出现中性粒细胞增多。长时间体力活动还可使尿素、肌酐、WBC增高，碳酸氢根减少。
6.药物对血液、尿液成分的影响是一个极其复杂的问题，药物可以使某些物质在体内的代谢发生变化；也可以干扰测定中的化学反应，即使同一种药物由于所用试验方法不同，就可以引起增加或降低两种相反的变化。有时为了进行某项化验，必须停服某种药物，才能得到准确结果。因此医生在选择与解释试验时，必须考虑药物的影响，如用大剂量青霉素，可致血AST、CK、Cre、Tp升高，Alb、Bil降低。对尿蛋白测定的影响(假阳或假阴)，用大剂量Vitc可使酶法测定血中Glu、Cho、TG的结果假性降低，排至尿中也可影响尿糖、隐血、酮体、胆红素等测定。
7. 药物对检验的影响非常复杂，15000多种药物对检验有干扰作用。众所周知，抗结核药、抗生素、抗白血病制剂、磺胺类药物，对肝功能有大小不一的影响，甚至几片常用药物可以引起严重的药物反应，故在采样检查之前，暂停各种药物是为上策，如不可停用，则应了解可能对检验结果产生的影响。其他如咖啡等饮料中咖啡因是中度兴奋剂和温和利尿剂，进入人体后代谢成多种化合物，对各种分析物有影响，例如血中TG含量增加，但Cho含量降低。
8.样本采集时间及部位对检验结果的影响。若对同一病人作多次测定最好每次在同一时间收集标本，便于比较，以减少人体内各分析物昼夜变化的影响。昼夜变化有内在因素(主要取决于人是在活动还是在睡眠状态)，以及外来因素(如饮食、体育活动或其他和某一特定时间有关的活动)。血样标本采集理想的时间是早晨7：00到8：00，尤其在目的为监测时，最后一次食物和液体摄入应在前一天下午6：00到7：00；做糖耐量试验或餐后两小时血糖的病人，一定要详细告诉病人何时抽血等事宜，尿标本采集时间取决于被测定的成分。用于清除率测定或所测分析物有昼夜变异，需要24h尿标本，定时过夜尿标本或称为清晨第一次尿标本，不仅提供肾脏浓缩能力评价，也有足够时间产生有形成分或沉淀，随意尿标本对常规过筛是适用的。但因其可能太稀，以致不能准确检测分析物浓度的轻度增加。测定特殊蛋白质，以检测和鉴别肾前、肾小球、肾小管和肾后引起的蛋白尿，清晨第一次尿标本是足够的。病人标本的采集时间一定要准确记录，如尿液标本超过2h即认为不新鲜。血液标本的采集部位应在同一静脉区，通常为手臂静脉。
9.采血体位：目前采用坐位和卧位较多，门诊采血以坐位为主，住院病人以卧位为主。切记不可站位采血，因其既不安全又影响结果，它可使血中Tp、Alb、血脂、ALP、ALT、血清、Fe等均有明显改变。体位影响血液循环，由于血浆和组织间液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆白蛋白可因此而浓度增大，总蛋白、酶、钙、胆红素、胆固醇及甘油三酯等亦因站位而浓度增加；血红蛋白、血细胞比容、红细胞计数亦于站位时增加。由于体位的因素，不要让病人自己到检验科来采血做血常规，或复查红、白细胞计数，以避免因体位引入的误差。
10.止血带的使用：扎止血带不超过1min，否则可使局部血氧含量降低，乳酸增加，pH下降。若压迫3min后可使Bil、Cho、AST、ALP等增加5%以上，正确的操作应先扎紧压脉带后观察血管走向，即时将压脉带扎紧，立即采血，采血动作迅速，一针见血，尤其对检测凝血象的标本尤为重要，力争1min内完成。
11.采样系统的使用：血样标本最好采用真空采血系统，这是保证质量的重要措施之一。目前推广使用真空采血系统可有效避免用错抗凝剂，保证了血与抗凝剂比例，解决了交叉污染，防止标本溶血和加分离胶加速血清分离等有效措施。真空采血系统采集血液后，应轻轻颠倒混匀5-10次，以确保抗凝剂和促凝剂(分离胶)发挥作用。
12.正确使用抗凝剂：目前常用的抗凝剂有肝素、EDTA盐和枸橼酸盐，实验室应正确使用相应的抗凝剂，且标本采集时应注意血液与抗凝剂的比例。
(1)肝素：通常用肝素锂，浓度为14.3IU/mL血，用量范围为12-30IU/mL，常用于血粘度测定，血气酸碱分析及酶学检查。
(2)EDTA盐：通常用EDTA-K2，浓度为1.5-2.0mg/dl，常用于全血细胞计数及血粘度测定。
(3)枸橼酸盐：通常用枸橼酸钠，浓度为0.109mmol/L或3.8%，主要用于凝血试验(抗凝剂与血液1：9混合，过高或过低，均可影响PT、APTT的结果)，RBC沉降率试验(抗凝剂与血液1：4混匀)。
13.血液标本采集后应尽快从采血现场运送至实验室，如果运送距离较远，特别是因分析物稳定性有影响，必要时可于采血现场分离出血清或血浆后再送往实验室，标本运送过程中要注意样本的包装、温度要求及处理方法等，要确保分析成分的稳定性，标本管在运送过程中要保持管口封闭，向上垂直放置，避免剧烈振动。
14.实验室标本的接收:严格执行病人、化验单及标本收集器皿的核对制度，保证无差错。对检验申请单要认真审核，包括检验项目、病人现状及用药情况记录，以及标本容器上的详细信息、采集时间及采集者的签名等，24h尿液收集要有真实时间记录及总量记录。收集标本应符合要求，签收人员应逐一检查标本的质量，避免空管或血少现象或严重污染等，对不合格的但可以接受的样本，签收人员记录标本的缺陷并作好临床解释工作，对于诸如空管等不可接纳的样本，签收人员应拒绝接受，同时注明拒收原因，并通知临床重新采集标本。
15.标本的准备处理：全血标本应尽快送检，必须注意是否存在干扰血凝块。这些血凝块指血的部分凝集，它将影响全血细胞计数和凝血试验结果。血清(浆)标本全血采取后应尽快自然地使血清(浆)从与血细胞接触的全血中分离出来。一般应于采血后2小时内分离出血清或血浆，以防止血细胞内外多种成分发生变化。血清标本离心前一般要先自行凝集，所等的时间包括凝血和血块收缩时间，通常这个过程大致要30分钟，加促凝剂时凝集可加快，切勿用竹签剥离凝血块，因人为剥离会诱导溶血，产生结果偏差。血浆标本的最大优点在于及时检测，而不需要等到血液凝固后检测，而且可以避免血液凝固引起的轻度溶血所导致的错误。另一方面血浆标本可避免血凝过程中RBC和PLT释放钾离子和酶，使得钾离子和部分酶增高，另一方面血清标本由于缺乏纤维蛋白原，而使血清总蛋白较低。
16.血清或(血浆)标本的处理方法：标本的离心，离心分离血清应选择相对离心力(RCF)为1000g-1200g(约相当于3000rpm/min)，离心时间为5-10分钟。离心全血需2000g(相当于4000rpm/min)，离心时间为15min。相同时间增加相对离心力或增加离心时间，将引起溶血。
17.溶血标本的处理：溶血可导致RBC内多种成分的释出，引起对测定方法的干扰，Hb≥0.2g/L，肉眼可见溶血。Hb的释出，可引起间接的干扰，因Hb在波长为431nm和555nm处有光吸收，若被测物选用与之相近波长作比色分析时，可导致假性增高。处理方法：轻度溶血，同时作血清空白；严重溶血，重留样本。RBC内含量高的血液化学成分在溶血后，这些化学成分在血清中浓度就会增高，避免用溶血标本测定在RBC内含物高的化学成分。如钾、ALP、AST、Bil、CK、LDH、ACP等。
18.乳糜标本的处理：高脂血症的病人往往可导致乳糜血，为了不影响检测，应对乳糜血进行澄清。具体方法如下：血清和(或)血浆与氟利昂以1：1在玻璃试管中混合。氟利昂在血浆和(或)血清下层，180℃颠倒试管3min，使充分混合。然后3000g离心6min。上清液为澄清的血清，中层含沉淀的脂蛋白，下层为多余的氟利昂，澄清过程可重复多次而不影响酶的活性和底物。
19.胆红素(黄疸)标本的处理：胆红素标本可以直接或间接地引起分析项目结果的改变，直接改变是因胆红素血清(或血浆)标本对光的吸收，而导致部分项目的假性增高，间接影响是胆红素的干扰作用，如胆红素对血清肌酐测定的干扰。处理方法前者作空白对照，后者进行干扰试验消除恒定误差。
20.尿液标本从流取到检验应在2小时内完成，如不能及时送检分析，必须加防腐剂，细菌检查标本应采用消毒容器，防止细菌污染，能在床边接种的标本最好在床边接种。
21.因分析不能立即进行或分析后需要重新检测，样本需要保存。
短期保存：全血细胞计数(不包括分类)所用EDTA抗凝血可在室温下保存24h。分类计数、涂片应在标本收集后5h内完成。如果用血细胞分析仪对血细胞分类，根据所用的不同的分析系统，标本保存都不应超过8h。用于APTT与PT的枸橼酸抗凝血浆，可在室温下保存8h。应在3h内测定凝血因子活力，而且血浆必须始终在4～8℃保存。用于检测酶或底物的血清或肝素抗凝血浆可在4～8℃保存一周，但酶对LDH和ACP例外，因LDH活力对冷不稳定，ACP只在酸性条件稳定，底物TG例外，因为内源性脂肪酶可分解TG为甘油。用于免疫球蛋白和特异性抗体测定的标本，4～8℃可保存一周。如果不超过25℃，标本普通的邮寄是可以的。用于激素和肿瘤标记物测定的标本在室温下，类固醇激素是比较稳定的，可保存3天；通常也适用于肿瘤标志物。如果多肽激素不能在当天分析，应该深冷冻，尤其是不稳定的ACTH、肾素、血管紧张素、胰岛素、生长激素和降钙素。
长期保存：长期保存要求保存温度低于-20℃，溶解必须缓慢，在4～8℃过夜或在水浴中不断搅动。通常在溶解中形成浓度梯度，所以分析前必须充分混匀，必须注意试管底部的沉积物，它们可能由冷球蛋白、异型蛋白或冷沉淀纤维蛋白原引起，如果必要，这些沉淀通过加热重新溶解。
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